Herbe à pic

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Neurolaena lobata
Neurolaena lobata
Neurolaena lobata, fleurs

Nom de la plante

Herbe à pic, Zeb a pic (créole), Virapic®

Dénomination latine internationale

Neurolaena lobata R.Br. ex Cass. = Pluchea symphytifolia (Mill.) Gillis

Famille botanique

Asteraceae

Description et habitat

  • Plante herbacée érigée arbustive de 2 à 4 m de haut, originaire des Antilles et d’Amérique centrale [2], feuilles alternes lancéolées, irrégulièrement dentées, laissant une trace jaune quand on les touche (TRAMIL [3]), panicules terminales de petites fleurs jaunes, le fruit est un akène brunâtre à aigrette
  • La morphologie foliaire change dès l'apparition des premières fleurs, les feuilles devenant alors très petites, la priorité physiologique étant donnée plus aux fleurs qu'aux feuilles

Histoire et tradition

  • Utilisée par la médecine traditionnelle des Maya Quiché du Guatemala
  • Il est utilisé dans la Caraïbe pour traiter les refroidissements, les fièvres, le rhumes et la toux
  • La médecine indigène de Colombie utilise la plante comme remède contre les démangeaisons, la gonorrhée, le paludisme, le rhume et comme répulsif contre les puces [1]

Parties utilisées

  • Feuilles et parties aériennes

Formes galéniques disponibles

  • Décoction de feuilles ou de parties aériennes fraîches ou sèches
  • Extrait hydro-alcoolique spécifique (VIRAPIC® [4])

Dosages usuels

  • Préparation traditionnelle : décoction de 30 grammes de parties aériennes ou de feuilles fraîches ou 5 grammes de feuilles séchées dans un litre d'eau, faire bouillir 5 minutes dans un récipient couvert. Laisser refroidir, filtrer et boire 1 tasse 3 fois par jour (TRAMIL)
  • Extrait hydro-alcoolique : une cuillerée à café matin et soir avec un verre d'eau

Composition

Composants principaux de la plante

Composants principaux des bourgeons ou jeunes pousses

Composants principaux de l'huile essentielle

Propriétés

Propriétés de la plante

  • Vulnéraire, favorise la cicatrisation des plaies, avec une activité antimicrobienne contre Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Escherichia coli [15]
  • Antiviral vis-à-vis des virus à ARN (rhinovirus, grippe, dengue [16], chikungunya, gastro-entérites à Rotavirus, coronavirus)
    • La relation structure-activité montre que la présence simultanée des radicaux 3-méthoxyle et 5-hydroxyle dans le squelette de flavone (comme dans l'axillarine et les chrysosplénols B et C) serait nécessaire à l'activité antivirale contre les rhinovirus à ARN [17]
    • Antigrippal presque spécifique
  • Inhibe les virus à ARN (empêche la fixation des virus sur la cellule) identique au mode d'action du Relenza® et du Mantadix® dans le cas de la grippe (apparemment d'effet beaucoup plus rapide cliniquement)
  • Inhibe la réplication du HIV en inhibant le transfert du HIV des cellules dendritiques aux lymphocytes [18]
  • Analgésique [19]
  • Antipyrétique [20] (flavonoïdes) [21]
  • Anti-inflammatoire [22] par inhibition de NF-kB (lactones sesquiterpéniques), inhibition de l'induction de molécules d'adhésion et de chimiokines dans les cellules endothéliales et les monocytes activés, la relation structure-activité montre l'importance de la double liaison en C4-C5 et C2-C3 et du groupe acétyle en C9 pour l'activité anti-inflammatoire [23], [24], activité antiproliférative remarquable contre des lignées cellulaires tumorales humaines (A2780, A431, HeLa et MCF7), les sesquiterpènes inhibent la production d’IL-8 induite par le LPS et le TNF-α (les plus efficaces étant la neurolobatine B et la 3-épi-désacétylisovaléroylhéliangine) [12]
  • Antipaludéen [25], [26], [27], [28] (neurolénine B)
  • Anti-maladie de Chagas (Trypanosoma cruzi) et potentiellement actif contre les Leihmanioses [29], [30], [31], [32], comme beaucoup de plantes de la famille des Asteraceae [33]
  • Filaricide (Brugia pahangi) [34]
  • Anti-ulcéreuse (synthèse de prostaglandines, production de mucus) [35], anti-inflammatoire, analgésique
  • Antidiabétique [36]
  • Antitumoral, potentialités dans certains lymphomes, la lobatine B (lactone sesquiterpénique furanohéliangolide) cible les cellules malignes des lymphomes anaplasiques à grandes cellules par au moins deux propriétés: l'inhibition du NPM / ALK, protéine de fusion la plus répandue, et l’inhibition de NF-κB n'affectant pas les cellules normales, ce qui limite l'intravasation des cellules tumorales dans le système lymphatique donc la progression métastatique [37], [38], [39]
  • Antimycosique (Dermatophytes) [40]
  • Peut être utilisé dans la lutte contre les insectes (effet anti-appétant antagoniste par le GABA) [41]

Propriétés du bourgeon

Propriétés de l'huile essentielle

Indications

Indications de la plante entière (phytothérapie)

  • Grippe
  • Dengue
  • Chikungunya
  • Rhinoviroses
  • Fièvre et paludisme en médecine traditionnelle
  • Bilharziose (usage traditionnel, macérée dans du rhum)
  • Maladie de Chagas (trypanosomiases)
  • Ulcère gastrique

Indications du bourgeon (gemmothérapie)

Indications spécifiques de l'huile essentielle (aromathérapie)

Mode d'action connu ou présumé

  • Inhibe les virus à ARN en empêchant la fixation des virus sur la cellule et leur réplication intra-cellulaire
    • Le mécanisme envisagé de l'effet antiviral est l’inhibition de l’enzyme dihydroorotate déshydrogénase DHODH, qui entraine un effet inhibiteur de la biosynthèse des bases pyrimidiques, nécessaires pour la constitution du patrimoine génétique du virus dans le cytoplasme de la cellule-hôte [42], [43], [44]
      • Ce mode d’action est déjà exploité dans d’autres viroses : par exemple la ribavirine, antiviral utilisé dans l’hépatite C, est un analogue nucléosidique de synthèse, qui inhibe la biosynthèse de guanine
      • Le mécanisme faisant intervenir la DHODH est impliqué dans l’inhibition de certains autres virus, tels que des Rotavirus [45], ou le virus de la dengue [46], ou celui de la grippe [47], ou d’autres [48], [49]
  • Propriétés anti-inflammatoires
  • Propriétés inhibitrices de NF-κB

Formulations usuelles

Réglementation

Effets indésirables éventuels et précautions d'emploi

  • Par voie orale, la décoction de feuille fraîche (5g/kg/jour), l'extrait aqueux de feuille sèche (1-5 g/kg) et l'extrait hydroalcoolique (5 g/kg) ne montrent aucune toxicité chez la souris (TRAMIL)
  • Éviter chez l’enfant en bas âge, la femme enceinte ou allaitante (par manque d’information)

Références bibliographiques

  1. José González. Plantas utiles de la selva. Organización para Estudios Tropicales Flora Digital de La Selva, 08-Feb-2013 [1]
  2. K.M. Kerr, T.J. Mabry, S. Yoser. 6-Hydroxy- and 6-methoxyflavonoids from Neurolaena lobata and N. macrocephala. Phytochemistry, Volume 20, Issue 4, 1981, Pages 791-794
  3. Hussain, Hidayat & Al-Harrasi, Ahmed & Abbas, Ghulam & Rehman, Najeeb & Mabood, Fazal & Ahmed, Ishtiaq & Saleem, Muhammad & van Ree, Teuns & Green, Ivan & Anwar, Saeed & Badshah, Amin & Shah, A. & Ali, Iftikhar. (2013). The Genus Pluchea: Phytochemistry, Traditional Uses, and Biological Activities. Chemistry & biodiversity. 10. 1944-71. 10.1002/cbdv.201200140.
  4. Philippe Bal. Étude bibliographique des flavonoïdes sulfatés: répartition, structure et propriétés biologiques. Sciences pharmaceutiques. Thèse. 2000. dumas-01578333
  5. Claus M. Passreiter, Detlef Wendisch, Daniel Gondol. Sesquiterpene lactones from Neurolaena lobata. Phytochemistry, Volume 39, Issue 1, May 1995, Pages 133-137
  6. Passreiter, C. M. (1998). Quantification of sesquiterpene lactones in leaves of Neurolaena lobata. Phytochemical Analysis: An International Journal of Plant Chemical and Biochemical Techniques, 9(2), 67-70.
  7. Passreiter CM, Aldana BE. Variability of sesquiterpene lactones in Neurolaena lobata of different origin. Planta Med. 1998 Jun;64(5):427-30. PMID 17253261
  8. Alfonso G. Ober, Lowell E. Urbatsch, Nikolaus H. Fischer. Sesquiterpene lactones from Calea leptocephala. Phytochemistry, Volume 25, Issue 2, 1986, Pages 467-470, https://doi.org/10.1016/S0031-9422(00)85502-8.
  9. MANCHAND, Percy S. et BLOUNT, John F. Chemical constituents of tropical plants. 11. Stereostructures of neurolenins A and B, novel germacranolide sesquiterpenes from Neurolaena lobata (L.) R. Br. The Journal of Organic Chemistry, 1978, vol. 43, no 22, p. 4352-4354.
  10. J. Borges-del-Castillo, M. Teresa Manresa-Ferrero, F. Rodríguez-Lius, P. Vázquez-Bueno, Mahabir P. Gupta, P. Joseph-Nathan. Panama Flora. II. New Sesquiterpene Lactones From Neurolaena lobata. J. Nat. Prod. 1982, 45, 6, 762-765
  11. 11,0 et 11,1 Paredes, ME; Morales, RE; Lima, WK; Hu, S; Jurado, AL; Farchi, E; Prieto, JM; (2019) Morphoanatomical and phytochemical studies for the quality control of Neurolaena lobata (L.) R.Br. ex Cass. (Asteraceae). Blacpma (Boletín Latinoamericano Y Del Caribe De Plantas Medicinales Y Aromáticas) , 18 (3) pp. 277-288.
  12. 12,0 et 12,1 Lajter, I., Vasas, A., Béni, Z., Forgo, P., Binder, M., Bochkov, V., Zupkó, I., Krupitza, G., Frisch, R., Kopp, B., & Hohmann, J. (2014). Sesquiterpenes from Neurolaena lobata and their antiproliferative and anti-inflammatory activities. Journal of natural products, 77(3), 576–582. https://doi.org/10.1021/np400834c. PMID 24476550
  13. Claus M Passreiter. Pyrrolizidine alkaloids from Neurolaena lobata. Biochemical Systematics and Ecology, Volume 26, Issue 8, December 1998, Pages 839–843
  14. Simionatto, Euclésio & Stüker, Caroline & Porto, Carla & Dalcol, Ionara & Silva, Ubiratan & Morel, Ademir & Simionatto, Edésio & Júnior, Alberto. (2007). Essential Oil of Pluchea quitoc Dc. (Asteraceae). Journal of Essential Oil Research - J ESSENT OIL RES. 19. 494-497. 10.1080/10412905.2007.9699961.
  15. Nayak BS, Ramlogan S, Chalapathi Rao A, Maharaj S. Neurolaena lobata L. promotes wound healing in Sprague Dawley rats. Int J Appl Basic Med Res. 2014 Jul;4(2):106-10. doi: 10.4103/2229-516X.136791. PMID 25143886
  16. Abad MJ, Bermejo P, Sanchez Palomino S, Chiriboga X, Carrasco L. Antiviral activity of some South American medicinal plants. Phytother Res. 1999 Mar;13(2):142-6. PMID 10190189
  17. Tsuchiya Yoshinor, Shimizu Mineo, Hiyama Yoshiyuki, Itoh Kiyoshi, Hashimoto Yoshinobu, Nakayama Mitsuru, Horie Tokunaru, Morita Naokata. (1985). Antiviral activity of natural occurring flavonoids in vitro. Chemical & pharmaceutical bulletin. 33. 3881-6. 10.1248/cpb.33.3881.
  18. Bedoya LM, Alvarez A, Bermejo M, González N, Beltrán M, Sánchez-Palomino S, Cruz SM, Gaitán I, del Olmo E, Escarcena R, García PA, Cáceres A, San Feliciano A, Alcamí J. Guatemalan plants extracts as virucides against HIV-1 infection. Phytomedicine. 2008 Jun;15(6-7):520-4. PMID 18068962
  19. Gracioso JS, Paulo MQ, Hiruma Lima CA, Souza Brito AR. Antinociceptive effect in mice of a hydroalcoholic extract of Neurolaena lobata (L.) R. Br. and its organic fractions. J Pharm Pharmacol. 1998 Dec;50(12):1425-9. PMID 10052860
  20. Mildred, G. G., Carlos, E., & Cecilia, D. (2007). Antipyretic effect of the aqueous extract obtained from leaves of Neurolaena lobata (Asteraceae) on a pyretic model induced by brewer’s yeast. Revista Médica de la Universidad de Costa Rica. Volumen, 1(1).
  21. Begum, T. & Anand, A. & Senthil, Raghul. (2010). Antipyretic Activity of Azima tetracantha in Experimental Animals. Research J. Pharmacognosy and Phytochemistry. 2(6):. 103-108.
  22. Walshe-Roussel, B., Choueiri, C., Saleem, A., Asim, M., Caal, F., Cal, V., ... & Arnason, J. T. (2013). Potent anti-inflammatory activity of sesquiterpene lactones from Neurolaena lobata (L.) R. Br. ex Cass., a Q’eqchi’Maya traditional medicine. Phytochemistry, 92, 122-127.
  23. McKinnon R, Binder M, Zupkó I, Afonyushkin T, Lajter I, Vasas A, de Martin R, Unger C, Dolznig H, Diaz R, Frisch R, Passreiter CM, Krupitza G, Hohmann J, Kopp B, Bochkov VN. Pharmacological insight into the anti-inflammatory activity of sesquiterpene lactones from Neurolaena lobata (L.) R.Br. ex Cass. Phytomedicine. 2014 Oct 15;21(12):1695-701. doi: 10.1016/j.phymed.2014.07.019. PMID 25442279
  24. Walshe-Roussel B, Choueiri C, Saleem A, Asim M, Caal F, Cal V, Rojas MO, Pesek T, Durst T, Arnason JT. Potent anti-inflammatory activity of sesquiterpene lactones from Neurolaena lobata (L.) R. Br. ex Cass., a Q'eqchi' Maya traditional medicine. Phytochemistry. 2013 Aug;92:122-7. doi: 10.1016/j.phytochem.2013.05.004. PMID 23747054
  25. François G, Passreiter CM, Woerdenbag HJ, Van Looveren M. Antiplasmodial activities and cytotoxic effects of aqueous extracts and sesquiterpene lactones from Neurolaena lobata. Planta Med. 1996 Apr;62(2):126-9. PMID 8657743
  26. Franssen FF, Smeijsters LJ, Berger I, Medinilla Aldana BE. In vivo and in vitro antiplasmodial activities of some plants traditionally used in Guatemala against malaria. Antimicrob Agents Chemother. 1997 Jul;41(7):1500-3. PMID 9210673
  27. Blair, Silvia, and Beatriz Madrigal. Plantas antimaláricas de Tumaco: costa pacífica colombiana. Universidad de Antioquia, 2005.
  28. Blair S, Mesa J, Correa A, Carmona-Fonseca J, Granados H, Sáez J. Antimalarial activity of neurolenin B and derivates of Eupatorium inulaefolium (Asteraceae). Pharmazie. 2002 Jun;57(6):413-5. PMID 12116880.
  29. Berger I, Passreiter CM, Cáceres A, Kubelka W. Antiprotozoal activity of Neurolaena lobata. Phytother Res. 2001 Jun;15(4):327-30. PMID 11406857
  30. Berger I, Barrientos AC, Cáceres A, Hernández M, Rastrelli L, Passreiter CM, Kubelka W. Plants used in Guatemala for the treatment of protozoal infections: II. Activity of extracts and fractions of five Guatemalan plants against Trypanosoma cruzi. J Ethnopharmacol. 1998 Sep;62(2):107-15. PMID 9741882
  31. Cáceres A, López B, González S, Berger I, Tada I, Maki J. Plants used in Guatemala for the treatment of protozoal infections. I. Screening of activity to bacteria, fungi and American trypanosomes of 13 native plants. J Ethnopharmacol. 1998 Oct;62(3):195-202. PMID 9849628
  32. Schmidt TJ, Da Costa FB, Lopes NP, Kaiser M, Brun R. In Silico prediction and experimental evaluation of furanoheliangolide sesquiterpene lactones as potent agents against Trypanosoma brucei rhodesiense. Antimicrob Agents Chemother. 2014;58(1):325-32. doi: 10.1128/AAC.01263-13. PMID 24165182 texte intégral
  33. Moraes Neto, R. N., Setúbal, R., Higino, T., Brelaz-de-Castro, M., da Silva, L., & Aliança, A. (2019). Asteraceae Plants as Sources of Compounds Against Leishmaniasis and Chagas Disease. Frontiers in pharmacology, 10, 477. https://doi.org/10.3389/fphar.2019.00477 PMID 31156427
  34. Fujimaki Y, Kamachi T, Yanagi T, Cáceres A, Maki J, Aoki Y. Macrofilaricidal and microfilaricidal effects of Neurolaena lobata, a Guatemalan medicinal plant, on Brugia pahangi. J Helminthol. 2005 Mar;79(1):23-8. PMID 15831109
  35. Gracioso JS, Hiruma-Lima CA, Souza Brito AR. Antiulcerogenic effect of a hydroalcoholic extract and its organic fractions of Neurolaena lobata (L.) R.BR. Phytomedicine. 2000 Jul;7(4):283-9. PMID 10969721
  36. Mahabir P. Gupta, Nilka G. Solis, Mario Esposito Avella, Ceferino Sanchez. Hypoglycemic activity of neurolaena lobata (L.) R. Br. Journal of Ethnopharmacology, Volume 10, Issue 3, May 1984, Pages 323-327. PMID 6748709
  37. Kiss I, Unger C, Huu CN, Atanasov AG, Kramer N, Chatruphonprasert W, Brenner S, McKinnon R, Peschel A, Vasas A, Lajter I, Kain R, Saiko P, Szekeres T, Kenner L, Hassler MR, Diaz R, Frisch R, Dirsch VM, Jäger W, de Martin R, Bochkov VN, Passreiter CM, Peter-Vörösmarty B, Mader RM, Grusch M, Dolznig H, Kopp B, Zupko I, Hohmann J, Krupitza G. Lobatin B inhibits NPM/ALK and NF-κB attenuating anaplastic-large-cell-lymphomagenesis and lymphendothelial tumour intravasation. Cancer Lett. 2015 Jan 28;356(2 Pt B):994-1006. doi: 10.1016/j.canlet.2014.11.019. PMID 25444930
  38. Unger C, Popescu R, Giessrigl B, Laimer D, Heider S, Seelinger M, Diaz R, Wallnöfer B, Egger G, Hassler M, Knöfler M, Saleh L, Sahin E, Grusch M, Fritzer-Szekeres M, Dolznig H, Frisch R, Kenner L, Kopp B, Krupitza G. The dichloromethane extract of the ethnomedicinal plant Neurolaena lobata inhibits NPM/ALK expression which is causal for anaplastic large cell lymphomagenesis. Int J Oncol. 2013 Jan;42(1):338-48. doi: 10.3892/ijo.2012.1690. PMID 23135783
  39. Unger C, Kiss I, Vasas A, Lajter I, Kramer N, Atanasov AG, Nguyen CH, Chatuphonprasert W, Brenner S, Krieger S, McKinnon R, Peschel A, Kain R, Saiko P, Szekeres T, Kenner L, Hassler MR, Diaz R, Frisch R, Dirsch VM, Jäger W, de Martin R, Bochkov VN, Passreiter CM, Peter-Vörösmarty B, Mader RM, Grusch M, Dolznig H, Kopp B, Zupko I, Hohmann J, Krupitza G. The germacranolide sesquiterpene lactone neurolenin B of the medicinal plant Neurolaena lobata (L.) R.Br. ex Cass inhibits NPM/ALK-driven cell expansion and NF-κB-driven tumour intravasation. Phytomedicine. 2015 Aug 15;22(9):862-74. doi: 10.1016/j.phymed.2015.06.003. PMID 26220634
  40. Caceres A, Lopez BR, Giron MA, Logemann H. Plants used in Guatemala for the treatment of dermatophytic infections. 1. Screening for antimycotic activity of 44 plant extracts. J Ethnopharmacol. 1991 Mar;31(3):263-76. PMID 2056755
  41. Claus M Passreiter, Murray B Isman. Antifeedant bioactivity of sesquiterpenelactones from neurolaena lobata and their antagonism by γ-aminobutyric acid. Biochemical Systematics and Ecology, Volume 25, Issue 5, July 1997, Pages 371–377
  42. Coelho, A. R., & Oliveira, P. J. (2020). Dihydroorotate dehydrogenase inhibitors in SARS-CoV-2 infection. European journal of clinical investigation, 50(10), e13366. https://doi.org/10.1111/eci.13366 PMID 32735689
  43. Xu, Y., & Jiang, H. (2020). Potential treatment of COVID-19 by inhibitors of human dihydroorotate dehydrogenase. Protein & cell, 11(10), 699–702. https://doi.org/10.1007/s13238-020-00769-9 PMID 32761523
  44. Xiong, R., Zhang, L., Li, S., Sun, Y., Ding, M., Wang, Y., Zhao, Y., Wu, Y., Shang, W., Jiang, X., Shan, J., Shen, Z., Tong, Y., Xu, L., Chen, Y., Liu, Y., Zou, G., Lavillete, D., Zhao, Z., Wang, R., … Xu, K. (2020). Novel and potent inhibitors targeting DHODH are broad-spectrum antivirals against RNA viruses including newly-emerged coronavirus SARS-CoV-2. Protein & cell, 11(10), 723–739. https://doi.org/10.1007/s13238-020-00768-w PMID 32754890
  45. Sunrui Chen, Shihao Ding, Yuebang Yin, Lei Xu, Pengfei Li, Maikel P. Peppelenbosch, Qiuwei Pan, Wenshi Wang. Suppression of pyrimidine biosynthesis by targeting DHODH enzyme robustly inhibits rotavirus replication. Antiviral Research, Volume 167, 2019, Pages 35-44, https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2019.04.005.
  46. Wang, Q. Y., Bushell, S., Qing, M., Xu, H. Y., Bonavia, A., Nunes, S., Zhou, J., Poh, M. K., Florez de Sessions, P., Niyomrattanakit, P., Dong, H., Hoffmaster, K., Goh, A., Nilar, S., Schul, W., Jones, S., Kramer, L., Compton, T., & Shi, P. Y. (2011). Inhibition of dengue virus through suppression of host pyrimidine biosynthesis. Journal of virology, 85(13), 6548–6556. https://doi.org/10.1128/JVI.02510-10 PMID 21507975
  47. Smee DF, Hurst BL, Day CW. D282, a non-nucleoside inhibitor of influenza virus infection that interferes with de novo pyrimidine biosynthesis. Antivir Chem Chemother 2012 ; 22 : 263-72.
  48. Hoffmann HH, Kunz A, Simon VA, et al. Broad-spectrum antiviral that interferes with de novo pyrimidine biosynthesis. Proc Natl Acad Sci USA 2011 ; 108 : 5777-82.
  49. Munier-Lehmann H, Vidalain PO, Tangy F, Janin YL. On dihydroorotate dehydrogenases and their inhibitors and uses. J Med Chem 2013 ; 56 : 3148-67.
  • Collectif TRAMIL. Pharmacopée végétale Caribéenne. Ed. Désormeaux. Paris. 1999
  • Kuldeep Dhama, Kumaragurubaran Karthik, Rekha Khandia, Ashok Munjal, Ruchi Tiwari, Rajneesh Rana, Sandip Kumar Khurana, Sana Ullah, Rifat Ullah Khan, Mahmoud Alagawany, Mayada Ragab Farag, Maryam Dadar, Sunil Kumar Joshi. Medicinal and Therapeutic Potential of Herbs and Plant Metabolites - Extracts Countering Viral Pathogens - Current Knowledge and Future Prospects. Current Drug Metabolism, Volume 19 , Issue 3 , 2018 DOI : 10.2174/1389200219666180129145252
  • Marc-Alexandre Tareau. Les pharmacopées métissées de Guyane: ethnobotanique d’une phytothérapie en mouvement. Biologie végétale. Université de Guyane, 2019. Français. NNT: 2019YANE0007 . tel-02926473
  • Joly, L. G., Guerra, S., Septimo, R., Solis, P. N., Correa, M., Gupta, M., ... & Sandberg, F. (1987). Ethnobotanical inventory of medicinal plants used by the Guaymi Indians in Western Panama. Part I. Journal of Ethnopharmacology, 20(2), 145-171. PMID 3657246
  • Joly, L. G., Guerra, S., Séptimo, R., Solís, P. N., Correa, M. D., Gupta, M. P., Levy, S., Sandberg, F., & Perera, P. (1990). Ethnobotanical inventory of medicinal plants used by the Guaymi Indians in western Panama. Part II. Journal of ethnopharmacology, 28(2), 191–206. https://doi.org/10.1016/0378-8741(90)90029-s PMID 2329810